實驗?zāi)康?/span>：驗證沛歐SKD-200型凱氏定氮儀對低蛋白量樣品的檢測準確度與度

實驗設(shè)計人：沙金

實驗執(zhí)行人：沙金

實驗時期：2010-3-11

儀器與試劑：

凱氏定氮儀（SKD-200，上海沛歐分析儀器有限公司）

精密分析天平（FA2004，上海精科天平廠）

通風(fēng)櫥

水槽

500mL三角瓶若干

25mL酸式滴定管

50mL量筒

1mL移液器與槍頭

10mL離心管

藥匙

稱量紙

固體硫酸鉀/硫酸銅催化劑=3:1（w/w）

樣品1：0.5mg/mL BSA 2mL（containing 50% glycerol）

樣品2：0.5 mg/mL 大豆浸提液 2mL (containing 50% glycerol）

樣品3：標準硫酸銨 (1mg N/mL)

空白對照：saline (containing 50% glycerol）

濃硫酸(AR)

35% NaOH

2% H₃BO₃

混合指示劑：0.1%溴甲酚綠乙醇溶液:0.1%甲基的紅乙醇溶液=5:1

0.1N NaOH

0.1N HCl

0.01037N 滴定用HCl

操作步驟：

1.      消化：

將預(yù)先稱量好的固體硫酸鉀/硫酸銅催化劑粉末約6g（可適當(dāng)加量）小心加入洗凈干燥的消化管底部；分別將樣品1、2和空白對照（約2mL）各兩份用分析天平差減法直接倒入消化管底部，記錄各組重量；用量筒小心稱取濃硫酸16mL加入各消化管底部。將消化管放在管架上，放入消化爐，啟動通風(fēng)櫥。設(shè)置消化溫度時間曲線：170℃（根據(jù)樣品碳化和沸騰的情況，可適當(dāng)提高或降低預(yù)消化溫度，并盡量避免樣品碳化沸騰掛壁以提高檢測準確度），30min——250℃，10min——370℃（為保證消化效果，可根據(jù)情況適當(dāng)提高至400℃以上），120min。當(dāng)消化管內(nèi)出現(xiàn)穩(wěn)定的恒沸白色酸霧并回流時，可蓋上消化管蓋以減少硫酸損失。當(dāng)樣品被消化為明亮的藍綠色或綠色液體時，即可停止消化，待其冷卻至室溫后，取出蒸餾，關(guān)閉通風(fēng)櫥。

2.      蒸餾：

向凱氏定氮儀的三個儲液桶中分別加入足量的35%NaOH、2%H₃BO₃和蒸餾水（根據(jù)處理樣品量，至少1L），旋緊儲液桶蓋子。開機，打開循環(huán)水，不放入樣品，預(yù)蒸餾2min。向樣品管中小心加入20mL蒸餾水以稀釋硫酸，待其變?yōu)槊髁恋乃{色溶液時，小心放入蒸餾架，卡緊卡槽時注意將消化樣品管口卡緊以防止氨蒸氣流失；向500mL接收三角瓶中加入少量（約0.6mL）混合指示劑，并設(shè)定加硼酸12s，加堿8s，蒸餾8—9min，保存設(shè)置后啟動儀器。當(dāng)氨蒸氣隨冷凝水流出時（注意氨蒸氣管出口浸沒于接收三角瓶的硼酸溶液中），接收瓶中的硼酸溶液會由玫紅色變?yōu)樗{色，待蒸餾完畢，用蒸餾水將氨蒸氣管出口的殘液沖洗入接收瓶后取出待測。將樣品管取出，小心倒入水槽，并及時清洗。放入下一個樣品管和接收瓶，重復(fù)以上操作。蒸餾完畢后，關(guān)閉循環(huán)水。待蒸餾水冷卻后放出。如短時間內(nèi)不再使用定氮儀，應(yīng)用蒸餾水替換酸液和堿液，重復(fù)加酸加堿過程以清洗酸堿管路，維護設(shè)備。

3.      滴定

用0.1N NaOH、0.1NHCl、蒸餾水分別潤洗酸式滴定管各三次，zui后用0.01037N滴定用標準HCl潤洗兩三次。加入0.01037N滴定用標準HCl，并小心放液至0刻度。開始滴定，左手控制滴定速度，右手不斷搖動混勻三角瓶中溶液。（可預(yù)先對樣品消耗鹽酸量有一個大致的估計，即每毫升0.01N鹽酸可滴定約0.14mg氮）臨近滴定終點時溶液開始由藍色變?yōu)樗{灰色，在zui后一滴或半滴時微微呈現(xiàn)紫紅色。視線與滴定管水平時讀取并記錄鹽酸消耗量。用0.01037N滴定用標準HCl補滿至0刻度后，可滴定下一個樣品。

實驗結(jié)果：

1.      各組樣品取樣量：

注：甘油密度1.2613g/mL，生理鹽水密度1.00 g/mL，則樣品溶液密度1.1307g/mL

蛋白取樣量（mg）= 取樣量（g）/ 樣品溶液密度 X 0.5 mg/mL

2.      各組樣品消耗鹽酸量：

注：每消耗1mL0.01N的鹽酸相當(dāng)于0.14mg氮；動物膠K=5.6（N=18.0%），大豆制品K=6.0（16.7%）。

討論：

從檢測結(jié)果看，當(dāng)測量氮含量為0.18mg時，標準偏差控制在±3%以內(nèi)，而空白對照的含氮量進一步下降為0.03mg時，標準偏差仍控制在±10%以內(nèi)，實驗結(jié)果重復(fù)性較為理想。但兩組實驗測量值均大于真值，分析原因：1）BSA組高15.4%，懷疑實驗場所距動物房較近，造成結(jié)果偏高。2）大豆浸提液組高44.7%，懷疑不僅有1）的原因，而且浸提液中含有較高的非蛋白氮干擾，建議將浸提蛋白沉淀后再以凱氏定氮法測量。

另：以標準硫酸銨檢測的蒸餾回收效果，實驗結(jié)果表明：當(dāng)?shù)繛?mg時，以1500W蒸餾器蒸餾8min，平均氮回收率為96.9%；以1500W蒸餾器蒸餾9min，平均氮回收率可達100%，蒸餾回收效果理想。建議對于低蛋白含量樣品測量而言，降低蒸餾器功率，并適當(dāng)延長蒸餾時間可進一步改善回收率，從而使結(jié)果重復(fù)性更好